雪茄煙中霉菌培養(yǎng)基種類篩選、計(jì)數(shù)方法適用性研究(二)
1.3試驗(yàn)方法
1.3.1樣品稀釋
每個(gè)樣品各稱取25 g,用無(wú)菌剪刀剪碎,置于無(wú)菌均質(zhì)袋中,加入225 mL無(wú)菌磷酸鹽緩沖液,均質(zhì)器3擋均質(zhì)3 min,取均質(zhì)后樣液梯度稀釋,按照前期對(duì)樣品中霉菌含量的評(píng)估,依次制備4個(gè)稀釋梯度(10?1,10?2,10?3,10??)。每個(gè)樣品3次重復(fù),進(jìn)行稀釋接種。
1.3.2接種和培養(yǎng)
分別使用平板傾注法和平板涂布法在3種培養(yǎng)基上進(jìn)行平行試驗(yàn),最后對(duì)3種培養(yǎng)基及兩種接種方式進(jìn)行比較。
平板傾注法(QZ):先吸取1 mL各樣品的梯度稀釋液于培養(yǎng)皿中,再將20~25 mL 45℃左右的高壓蒸汽滅菌后的培養(yǎng)基傾倒于培養(yǎng)皿中。然后沿同一時(shí)針?lè)较蜉p微旋轉(zhuǎn)培養(yǎng)皿使樣品與培養(yǎng)基混合均勻,待培養(yǎng)基完全凝固后用封口膜密封,標(biāo)記后置于恒溫恒濕培養(yǎng)箱內(nèi)于28℃±1℃正置培養(yǎng)。其中GB法與YC/T法需培養(yǎng)至第5天,Biokar法需培養(yǎng)至第3天。
平板涂布法(TB):吸取各樣品的梯度稀釋液于各培養(yǎng)基表面(每個(gè)稀釋度分別吸取0.333 mL接種量并分別加入到3塊已提前制備好的培養(yǎng)基平板中),后用一次性無(wú)菌L型涂布棒涂抹均勻,待培養(yǎng)基表面水分晾干后密封進(jìn)行正置培養(yǎng),培養(yǎng)及計(jì)數(shù)方法與平板傾注法相同。具體技術(shù)路線及方法簡(jiǎn)稱如圖1所示。
圖1技術(shù)路線
1.3.3霉菌判讀,計(jì)數(shù)及數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)
按照各培養(yǎng)基特點(diǎn)直接肉眼觀察(必要時(shí)使用放大鏡)判別霉菌形態(tài)。
平板傾注法(最低檢出限10 CFU/g)霉菌計(jì)數(shù)公式:
霉菌含量=(∑???Q?/3)×T(1)
式中:Q?為每個(gè)重復(fù)的霉菌菌落總數(shù);i為重復(fù)次數(shù);T為稀釋倍數(shù)。
平板涂布法(最低檢出限10 CFU/g)霉菌計(jì)數(shù)公式:
霉菌含量=(∑???T?/3)×T(2)
式中:T?為每個(gè)重復(fù)的霉菌菌落總數(shù);i為重復(fù)次數(shù);T為稀釋倍數(shù)。
按照GB 4789.15—2016進(jìn)行霉菌菌落計(jì)數(shù)。
1.4數(shù)據(jù)分析
使用Microsoft Excel 2010軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)整理,將所檢測(cè)霉菌計(jì)數(shù)結(jié)果轉(zhuǎn)化為以10為底數(shù)的對(duì)數(shù)值(未檢出樣品的對(duì)數(shù)值按0.7統(tǒng)計(jì)),采用SPSS 26.0軟件進(jìn)行獨(dú)立樣本T檢驗(yàn),評(píng)價(jià)各方法對(duì)霉菌計(jì)數(shù)結(jié)果的差異顯著性。
使用Med Calc®Version 19.0.4軟件繪制Bland-Altman圖,其基本原理是計(jì)算出兩方法測(cè)量結(jié)果的一致性界限,并以圖形方式直觀反映,同時(shí)根據(jù)實(shí)際測(cè)量結(jié)果判斷兩種方法是否具有一致性。
2結(jié)果與討論
2.1霉菌計(jì)數(shù)方法比較
2.1.1 3種培養(yǎng)基平板涂布法的比較
對(duì)3種培養(yǎng)基平板涂布法霉菌計(jì)數(shù)結(jié)果分別進(jìn)行Bland-Altman圖比較,如圖2,圖3和圖4所示。將GB法-TB,Biokar法-TB和YC/T法-TB進(jìn)行比較,發(fā)現(xiàn)除低濃度樣本中的個(gè)別數(shù)據(jù)分布在95%上下限之外,其余樣本占比分別為92.31%,92.31%和89.74%的數(shù)據(jù)點(diǎn)落在95%上下限內(nèi),說(shuō)明3種方法間檢測(cè)結(jié)果一致性較好。當(dāng)樣品中霉菌含量低于102CFU/g時(shí),培養(yǎng)基對(duì)霉菌計(jì)數(shù)結(jié)果的影響較大,而當(dāng)樣品中霉菌含量高于102CFU/g時(shí),培養(yǎng)基對(duì)霉菌計(jì)數(shù)結(jié)果的一致性較好。表明3種培養(yǎng)基采用平板涂布法進(jìn)行接種,對(duì)霉菌計(jì)數(shù)結(jié)果的影響與樣品中霉菌含量有關(guān)。
如圖5所示,通過(guò)對(duì)A,B,C,D,E等5個(gè)樣品的菌落形態(tài)觀察發(fā)現(xiàn),3種培養(yǎng)基采用平板涂布法接種培養(yǎng)后樣品中典型霉菌菌落形態(tài)區(qū)別較大,其中GB法與YC/T法霉菌菌落較大,形態(tài)清晰易判讀。Biokar法典型菌落較小,分布均勻,更有助于計(jì)數(shù),但較難從菌落形態(tài)上區(qū)分出不同種類的霉菌,由此推測(cè)Biokar法所用SYMPHONY Agar快速顯色培養(yǎng)基中生長(zhǎng)促進(jìn)劑和選擇性系統(tǒng)既可以促進(jìn)霉菌的快速生長(zhǎng)又能抑制霉菌菌絲的過(guò)度繁殖。綜合比較發(fā)現(xiàn),平板涂布法接種培養(yǎng)基上霉菌菌落全部生長(zhǎng)于培養(yǎng)基表面,GB法與YC/T法的典型霉菌菌落形態(tài)最易判別,而B(niǎo)iokar法更易快速計(jì)數(shù)。
2.1.2 3種培養(yǎng)基的平板傾注法比較
對(duì)3種培養(yǎng)基的平板傾注法進(jìn)行分析,結(jié)果如圖6,圖7和圖8所示。從Bland-Altman圖中發(fā)現(xiàn),94.87%的數(shù)據(jù)點(diǎn)均落在95%上下限內(nèi),表明3種培養(yǎng)基的平板傾注法結(jié)果一致性較好。檢測(cè)樣品中霉菌含量低于102CFU/g時(shí),3種培養(yǎng)基在平板傾注法接種條件下與平板涂布法接種條件下表現(xiàn)出的霉菌計(jì)數(shù)結(jié)果一致。說(shuō)明無(wú)論采用平板傾注法還是平板涂布法接種,當(dāng)樣品中霉菌含量低于102CFU/g時(shí),各培養(yǎng)基所對(duì)應(yīng)的計(jì)數(shù)方法均存在一定的波動(dòng)性。
3種培養(yǎng)基中平板傾注法對(duì)樣品中霉菌生長(zhǎng)狀況的影響如圖9所示。平板傾注法與平板涂布法相比,霉菌菌落除生長(zhǎng)于培養(yǎng)基表面外,還在培養(yǎng)基內(nèi)部呈現(xiàn)出不同的立體生長(zhǎng)形態(tài)。YC/T法和GB法菌落生長(zhǎng)形態(tài)相似,部分霉菌生長(zhǎng)速率過(guò)快,菌落易蔓延,相互交錯(cuò),影響計(jì)數(shù)。Biokar法霉菌生長(zhǎng)速率較慢,更利于霉菌計(jì)數(shù)。
相關(guān)新聞推薦
1、快速藥敏檢測(cè)技術(shù)方法、原理、臨床轉(zhuǎn)化需求(一)
2、Comammox全程氨氧化微生物的發(fā)現(xiàn)和確認(rèn)(一)
3、產(chǎn)脂肪酶地衣芽孢桿菌LD-1302篩選、培養(yǎng)基及產(chǎn)酶條件研究(五)
4、草魚(yú)呼腸孤病毒培養(yǎng)與滴度測(cè)定、及在草魚(yú)、CIK細(xì)胞上的生長(zhǎng)特性研究(二)
